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酶聯(lián)免疫測(cè)定（ELISA）標(biāo)準(zhǔn)化中存在的問題

免疫測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)化的難點(diǎn)在于蛋白的不均一性、基質(zhì)效應(yīng)、交叉反應(yīng)以及需要測(cè)定接近測(cè)定方法下限的濃度等，所測(cè)定的免疫反應(yīng)性通常是在糖基化、降解和復(fù)合形式上有差異的蛋白同種型的混合體。

（一）基質(zhì)效應(yīng)

免疫測(cè)定的基質(zhì)效應(yīng)通常定義為干擾抗原和抗體間反應(yīng)但與分析物本身無關(guān)的非特異

因素?；|(zhì)效應(yīng)與測(cè)定模式和抗體選擇有較大關(guān)系，因此，其對(duì)不同免疫測(cè)定的影響方式也有所不同?；|(zhì)效應(yīng)通常由蛋白、鹽、磷脂、補(bǔ)體、抗免疫球蛋白抗體（類風(fēng)濕因子和人抗鼠抗體）、藥物和可能污染樣本的物質(zhì)引起。這些效應(yīng)可通過仔細(xì)的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)來減少，例如使用一定亞型的高親和力抗體或抗體片段、降低樣本對(duì)總測(cè)定體積的比例、在測(cè)定緩沖液中加入免疫球蛋白、理想的溫育溫度和較長(zhǎng)的溫育時(shí)間。免疫測(cè)定的校準(zhǔn)物通常用類似于樣本的基質(zhì)的緩沖液制備，基質(zhì)可為無分析物的人血清、無免疫學(xué)交叉反應(yīng)抗原的動(dòng)物血清或蛋白含量類似于樣本的人工緩沖液等。因?yàn)檠宓某煞指饔胁煌?，每批血清基質(zhì)的差異有可能會(huì)影響校準(zhǔn)，因此以純蛋白溶液作為基質(zhì)較容易保持一致，但對(duì)于結(jié)合至血清蛋白的激索來說，除了人血清外，其他基質(zhì)不能使用。

血清和血漿中總蛋白和鹽的濃度相當(dāng)穩(wěn)定，但尿液中鹽濃度則變化較大，鹽濃度增加對(duì)抗原抗體間反應(yīng)起一個(gè)抑制作用。如果樣本體積小于總反應(yīng)體積的10%~15%，則蛋白的影響不明顯，但有時(shí)為提高測(cè)定的敏感性，常需一個(gè)較大的樣本體積。因此，要求參考方法具有低的測(cè)定下限，且樣本體積對(duì)總反應(yīng)體積應(yīng)小至足以排除大部分基質(zhì)效應(yīng)。

樣本中的免疫球蛋白可通過與測(cè)定中所使用的特異抗體發(fā)生反應(yīng)而影響測(cè)定結(jié)果。如自身免疫病患者常有可與抗體反應(yīng)的類風(fēng)濕因子（RF）針對(duì)動(dòng)物免疫球蛋白的嗜異性天然抗體相當(dāng)普遍，但一般情況下其濃度和親和力較低。自身抗體和嗜異性天然抗體的存在通常會(huì)引起假陽性反應(yīng)。這些干擾可通過加入足量的來自同一種系的免疫球蛋白而減小，也可在測(cè)定中使用抗體的Fab或（F‘ab）2片段替代完整抗體來減小干擾，但如果樣本含有針對(duì)試劑抗體的個(gè)體基因型（idiotype）抗體，則這種方法無效。這種情況下只有將免疫球蛋白從樣本中去除或使用一個(gè)依據(jù)另一個(gè)抗體的方法測(cè)定。

各種補(bǔ)體成分均能與抗體反應(yīng)，從而干擾試劑抗體結(jié)合抗原及與次級(jí)抗體反應(yīng)的能力，在雙夾心測(cè)定中可引起假陽性，在競(jìng)爭(zhēng)抑制試驗(yàn)中引起假陽性。小鼠IgG2,和IgG2,免疫球蛋白亞對(duì)補(bǔ)體的效應(yīng)尤為敏感?？赏ㄟ^加熱樣本或在反應(yīng)緩沖液中加入螯合劑來排除補(bǔ)體的干擾，但加熱會(huì)影響很多的分析物，而螯合劑對(duì)諸如鍺螯合劑和酶等非放射性核索標(biāo)記物有干擾，因此傾向于使用對(duì)補(bǔ)體效應(yīng)不敏感的抗體或抗體片段建立測(cè)定方法。

有報(bào)道稱磷脂在類固醇測(cè)定中可干擾抗原的結(jié)合而引起結(jié)果的假增高，許多其他因子如血清分離膠中的成分、抗凝劑去垢劑、藥物、非酯化脂肪酸等對(duì)某些免疫測(cè)定也有干擾。

（二）抗原的不均一性和交叉反應(yīng)性

蛋白激索顯然是不均一的，其在血液循環(huán)中除了有生物學(xué)活性形式外，還有前激索、片段和亞單位。富甲狀腺索（PTH）、ACTH及其前體、催乳索和促胃液索的大的形式以及生長(zhǎng)激索的拼接變異體等均可引起測(cè)定問題。使用單克隆抗體的兩位點(diǎn)雙夾心測(cè)定大大改善測(cè)定的特異性，例如使用抗絨毛膜促性腺激索的。和P亞單位的單抗建立的雙夾心方法將不會(huì)測(cè)定游離的亞單位。使用針對(duì)ACTH或PTH的氨基和羧基末端部分的兩個(gè)抗體建立的雙夾心方法則不會(huì)測(cè)定無生物學(xué)活性的片段。一般情況下，所希望測(cè)定的是具有生物學(xué)活性的成分，但有時(shí)為了某些特定的臨床目的，則需要有特異的試驗(yàn)來測(cè)定降解產(chǎn)物，如hCG的核心成分。因此，為保證測(cè)定的特異性，就不僅要求有具有生物學(xué)活性的激索標(biāo)準(zhǔn)晶，而且要有臨床上相關(guān)的降解產(chǎn)物的標(biāo)準(zhǔn)品。

某些血清蛋白有在等電點(diǎn)上不同（如。1―抗胰蛋白酶）或聚合程度不同（如觸珠蛋白）的各種遺傳變異體，盡管這些變異體的比例不同會(huì)影響其免疫測(cè)定的結(jié)果，但這并不是血清蛋白免疫測(cè)定的突出問題。用于血漿蛋白測(cè)定的試驗(yàn)通常使用多克隆抗血清，多克隆抗體測(cè)定不了蛋白結(jié)構(gòu)上的微小差異。相反，使用單克隆抗體則有可能測(cè)不到某些變異體，這是血清蛋白免疫測(cè)定上的一個(gè)普遍問題糖蛋白的不均一性主要在于糖基化尤其是唾液酸含量的差異，唾液酸含量上的差異進(jìn)而引起蛋白等電點(diǎn)和電泳移動(dòng)性的差異?？贵w通常對(duì)這些差異不敏感，因此，糖的不均一性對(duì)免疫反應(yīng)性影響很小。然而蛋白上的糖鏈可通過修飾或覆蓋一個(gè)肽決定基而改變蛋白的免疫反應(yīng)性。相反，黏蛋白的主要抗原決定基則由糖成分所組成。免疫測(cè)定實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)上小的差異也會(huì)引起多態(tài)性抗原測(cè)定結(jié)果上較大的差異，黏蛋白抗原CA125,CA19―9和CA15―3的測(cè)定可以很明確的證明這一點(diǎn)。例如，由不同組織產(chǎn)生的CA15―3含有不同數(shù)量的20個(gè)氨基酸的串聯(lián)重復(fù)序列，而試驗(yàn)中測(cè)定抗原所用的單抗是用腫瘤細(xì)胞制備的，因而所測(cè)定的抗原是結(jié)構(gòu)不太明確的大分子。盡管大多數(shù)試劑廠家均使用相同的標(biāo)準(zhǔn)品和抗體，但其相互之間的相關(guān)性很差，這很可能是由于在實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)上的差異所致，因此每一種方法都應(yīng)有各自的參考范圍值。

（三）實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

免疫測(cè)定的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)主要涉及到抗體或抗原的使用濃度、溫育溫度、溫育時(shí)間、測(cè)定模式是采用競(jìng)爭(zhēng)抑制或雙夾心直接測(cè)定，以及雙夾心測(cè)定是采用一步還是兩步法等，其對(duì)測(cè)定的影響主要是試驗(yàn)的測(cè)定下限、特異性核簡(jiǎn)便性等。一般來說，較高的抗體或抗原反應(yīng)濃度、較高的溫育溫度（如37~C而非室溫下）、較長(zhǎng)的溫育時(shí)間可以改善免疫試驗(yàn)的測(cè)定下限，但這一切又只是相對(duì)的，還要從試劑的實(shí)際應(yīng)用著想，進(jìn)行合理的優(yōu)化。雙抗夾心酶免疫試劑由于其簡(jiǎn)單方便，又具有較好的測(cè)定下限和特異性，在大多數(shù)蛋白激索和腫瘤標(biāo)志物的測(cè)定上，現(xiàn)已基本上取代了放免競(jìng)爭(zhēng)抑制試驗(yàn)。雙抗夾心測(cè)定模式以兩步法進(jìn)行（即臨床樣本與酶標(biāo)抗體分兩步加入），可避免許多用一步法時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)的問題，如與標(biāo)記抗體可能發(fā)生交叉反應(yīng)但與固相捕獲抗體無交叉反應(yīng)的物質(zhì)可在*步溫育后的洗滌步驟中去除；又如一步法常出現(xiàn)的“鉤狀”效應(yīng)（即抗原濃度很高時(shí)反應(yīng)顯色反而很淺，表現(xiàn)為測(cè)假陽性）使用兩步法就可以避免。但由于兩步法所需測(cè)定時(shí)間相對(duì)要長(zhǎng)一些，因此目前在臨床實(shí)驗(yàn)中使用較多的是一步法。此外，當(dāng)所測(cè)物質(zhì)分子大小不一致時(shí)，大分子的反應(yīng)通常較小分子要慢，如溫育時(shí)間短，也會(huì)造成測(cè)定偏差。例如，在測(cè)定復(fù)合的前列腺特異抗原（PSA）（Mr90Kd）時(shí)，如使用較短的溫育時(shí)間，與游離PSA相比，其結(jié)果將偏低。

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